I. EXAMEN CLINIQUE ET ANAMNÈSE
| Élément évalué | Points clés |
|---|---|
| Antécédents | Hémorragiques personnels et familiaux, pathologies associées |
| Histoire hémorragique | Fréquence, intensité, localisation |
| Type d’hémorragies | Spontanées ou post-traumatiques |
| Muqueuses | Épistaxis, gingivorragies, ménorragies |
| Cutanées | Pétéchies, purpura |
| Répartition | Diffuse ou localisée |
| Chirurgie | Adénoïdectomie, amygdalectomie, extraction dentaire |
| Médicaments | Aspirine, AINS, clopidogrel, ticlopidine, β-lactamines fortes doses |
II. DIAGNOSTIC BIOLOGIQUE
1. Bilan initial d’hémostase
a. Numération plaquettaire et morphologie
| Paramètre | Données |
|---|---|
| Valeurs normales | 150–400 G/L |
| Prélèvement | EDTA, ponction veineuse franche |
| Frottis sanguin | Rapide après prélèvement |
| Méthodes | Impédance (Coulter), optique (Technicon), fluorimétrie, CMF |
| Marqueurs CMF | CD41 (GPIIb/IIIa), CD42 (GPIb) |
| Fausses thrombopénies | EDTA-dépendante, satellitisme, macroplaquettes |
b. Prélèvement en hémostase
| Condition | Recommandation |
|---|---|
| Garrot | < 1 minute |
| Anticoagulant | Citrate 0,109 M (3,2%) – 1V/9V |
| Hématocrite | Ajustement si <30% ou >55% |
| Délai d’analyse | 30 min – 2 h |
| Température | 20 °C |
| Premier tube | Ne pas utiliser pour l’hémostase |
c. Tests globaux
| Test | Intérêt |
|---|---|
| Temps de saignement | Exploration globale de l’hémostase primaire |
| PFA 100/200 | Temps d’occlusion |
| TP, TCA, TT, Fg | Éliminer anomalie de coagulation |
| Rétraction du caillot | Exploration fonction GPIIb/IIIa |
d. Rétraction du caillot
| Résultat | Interprétation |
|---|---|
| Absente après 3 h | Thrombopathie (Gp IIb/IIIa) |
| Présente < 3 h | Test négatif |
| FS capillaire | Orientation thrombopathie |
2. Tests spécifiques
a. Agrégation plaquettaire (transmission optique)
| Paramètre | Conditions |
|---|---|
| PRP | Sang citraté, jeûne |
| Centrifugation | 200–250 g / 10 min / 20 °C |
| Conservation | Température ambiante |
| Inducteurs | ADP, collagène, AA, ristocétine, thrombine, adrénaline, TRAP |
| Méthode | Turbidimétrique à 37 °C |
| Objectif | Diagnostic thrombopathies, suivi antiagrégants |
b. Principes de lecture
| Phénomène | Conséquence |
|---|---|
| Agrégation | ↓ particules en suspension |
| Transmission lumineuse | ↑ transmission |
| Courbes | Profil spécifique selon agoniste |
c. Immunophénotypage par cytométrie en flux
| Évaluation | Marqueurs |
|---|---|
| Récepteurs | GPIIb/IIIa, GPIb |
| Activation | GPIIb/IIIa active |
| Granules alpha | CD62P (P-sélectine) |
| Granules denses | CD63 |
| Procoagulant | Exposition phospholipides |
III. DIAGNOSTIC DIFFÉRENTIEL
| Pathologie | Arguments biologiques |
|---|---|
| Maladie de Willebrand | RIPA, vWF-RCo, FVIIIc |
| Afibrinogénémie congénitale | TQ et TCA allongés, fibrinogène indétectable |
IV. CONCLUSION
| Points clés |
|---|
| Interrogatoire et examen clinique essentiels |
| TS de moins en moins utilisé |
| Numération plaquettaire + morphologie |
| Agrégation plaquettaire centrale |
| Immunophénotypage par CMF |
| Diagnostic moléculaire |
| Anomalies de l’activité procoagulante plaquettaire |